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作者
吴燕梅1 许旭东2 马国需2 朱丹3 陈千思4 郑庆霞4 许亚龙4 周蓓1 吴燕春1 袁经权1,*
1 广西中医药大学科学实验中心,南宁 530200;
2 中国医学科学院北京协和医学院 药用植物研究所,北京 100193;
3 广西医科大学药学院,南宁 530021;
4 中国烟草总公司郑州烟草研究院,郑州 450001
摘要
摘要:目的 本研究以内生真菌土曲霉NSRT-4为研究对象,对其次级代谢产物及其抗菌活性进行了系统研究。方法 采用柱层析和高效制备液相色谱方法对土曲霉的次级代谢产物进行分离纯化,并通过微量二倍稀释法测试分离得到化合物的抗菌活性。结果 从土曲霉NSRT-4的发酵产物中分离得到7个化合物,包括1个新的二萜吲哚生物碱teraspiridole E (1),1个丁烯内酯类化合物aspulvinone E (2),3个生物碱类化合物dihydroisoflavipucine (3)、asterriquinol E (4)、asterriquinol F (5),2个环戊烯酮类化合物dihydroterrein (6)、terrein (7)。结论 化合物1为新化合物。抗菌活性测试结果表明,化合物1和6~7对大肠埃希菌表现出一定的抑制作用,其MIC值均为50 μg/mL。
关键词:土曲霉;次级代谢产物;抗菌活性;二萜吲哚生物碱;内生真菌
Secondary metabolites and their antimicrobial activities from endophytic fungus Aspergillus terreus NSRT-4
Abstract Objective To systematically investigate the secondary metabolites and their antimicrobial activities of the endophytic fungus Aspergillus terreus NSRT-4. Methods The secondary metabolites were isolated and purified using column chromatography and high-performance preparative liquid chromatography (HPLC). The antimicrobial activities of the isolated compounds were evaluated using the microdilution method. Results Seven compounds were isolated from the fermentation product of A. terreus NSRT-4, including a new diterpene indole alkaloid teraspiridole E (1), a butenolide aspulvinone E (2), three alkaloids dihydroisoflavipucine (3), asterriquinol E (4), asterriquinol F(5), two cyclopentenones dihydroterrein (6), terrein (7). Conclusion Among these, compound 1 was identified as a new compound. Antimicrobial activity assays revealed that compounds 1, and 6~7 exhibited moderate inhibitory effects against Escherichia coli with MIC values of 50 μg/mL.
Key words Aspergillus terreus; Secondary metabolites; Antibacterial activity; Diterpene-indole alkaloid;Endophytic fungi
植物内生菌是指在植物生命周期的至少一部分时间内生活在植物体内而不引起任何疾病的微生物[1]。植物内生真菌是新型活性天然产物的重要来源,具有合成多种生物活性代谢产物的潜力,这些代谢物可以直接或间接用作多种疾病的治疗剂[2]。例如,Stierle从短叶红豆杉(Taxus brevifolia Nutt.)的韧皮部分离出能够产生抗癌活性成分紫杉醇的内生真菌[3];Puri从植物Nothapodytes foetida内生真菌Entrophospora infrequens分离出具有抗肿瘤活性作用的喜树碱[4]。曲霉作为最主要的真菌属之一,被认为是天然产物的主要来源[5]。
作为曲霉属的重要成员,土曲霉能够产生结构新颖且生物活性多样的次级代谢产物。根据骨架特征,这些化合物主要分为丁烯内酯类[6]、生物碱类[7]、萜类[8]、聚酮类[9]和环肽类[10]等化合物,并表现出抗菌[11]、抗炎[12]、治疗阿尔茨海默病[13]、糖尿病[14]和抗肿瘤[15]等多种生物活性。尤其值得注意的是,土曲霉是多种临床药物的生产菌株,其中最具代表性的是降脂药物洛伐他汀;同时,该菌产生的Terrein类物质因其独特的4H-呋喃-3-酮骨架结构,在抗肿瘤和抗炎药物研发中展现出独特优势[16]。因此,土曲霉次级代谢产物的研究对天然产物的扩充及药物先导化合物的发现具有十分重要的意义。
本文对内生真菌土曲霉NSRT-4的次级代谢产物及其抗菌活性进行了研究,从其大米发酵产物中分离得到7个单体化合物(图1),包括1个新的二萜吲哚生物碱teraspiridole E(1),1个丁烯内酯类化合物aspulvinone E(2),3个生物碱类化合物dihydroisoflavipucine(3)、asterriquinol E(4) 、asterriquinol F(5),2个环戊烯酮类化合物dihydroterrein(6)、terrein(7)。此外,对上述化合物进行了体外抗菌活性评估。
1 仪器与材料
LUMTECH Calmflow Plus分析兼制备型液相色谱仪(德国Knauer公司);770R型回转式振荡恒温培养箱(美国A PLUS公司);Bruker AvanceⅢ600型核磁共振波谱仪(德国Bruker公司);ACQUITY PremierSYNAPT XS离子淌度-四级杆飞行时间串联质谱仪(美国Waters公司);IGS180型生物培养箱(美国Thermo Fisher公司);SB-C18半制备色谱柱(250 mm×9.4 mm,5 μm,安捷伦科技有限公司);紫外引导自动纯化系统(美国Waters公司);N-1210BV-WB旋转蒸发仪(日本东京理化器械株式会社);多功能酶标仪(瑞士TecanSpark公司);WFH-204BS型手提式紫外分析仪(杭州齐威仪器有限公司);马铃薯葡萄糖琼脂培养基(青岛海博生物科技有限公司);马铃薯液体培养基(青岛海博生物科技有限公司);薄层层析硅胶板GF型(上海生工生物工程股份有限公司);分析级甲醇(国药集团化学试剂有限公司);色谱甲醇(德国Merck公司);娃哈哈水;金黄色葡萄球菌CMCC(B)26003(广东环凯生物科技有限公司);大肠埃希菌CMCC(B)44102(广东环凯生物科技有限公司)。
2 方法
2.1 菌株分离
实验所用样品烟草根于2023年7月18日采自河南省许昌市襄城县。内生真菌的分离方法参照文献并进行了改良[17],所有操作均在超净工作台内完成。具体步骤如下:首先,用无菌水冲洗烟草根部组织3次,以去除表面附着的泥土等大颗粒杂质;随后,将组织置于75%乙醇中浸泡60 s,再用无菌水冲洗3次;接着,用1%醋酸钠溶液浸泡30 s,再次用无菌水冲洗3次。最后一次冲洗的无菌水涂布于马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)上作为阴性对照,若培养基上无微生物生长,则表明烟草根部组织表面消毒彻底。将消毒后的根部组织切成3~5 mm的小段,切面朝下平铺于PDA培养基上。待内生真菌生长后,挑取菌落进行纯化。
2.2 菌株鉴定
菌株NSRT-4分离自烟草根部组织,其基因组DNA的提取、PCR扩增、产物纯化及全基因组测序等实验流程均委托天津诺禾致源科技股份有限公司完成。基于获得的基因组序列,与NCBI数据库进行BLAST比对分析,并采用MEGA构建菌株系统发育树。
2.3 菌株发酵
将土曲霉菌种接种于已灭菌的PDA平板培养基上,在28 ℃条件下培养7 d后,刮取平板上的菌丝接种至马铃薯葡萄糖液体培养基(PDB)中,在28 ℃,转速为220 r/min的振荡培养箱中培养3 d,直至PDB液体培养基长满菌丝球,形成菌种种子液,将种子液接种至大米培养基中(1 L广口锥形瓶,180 g大米加180 mL水),发酵80瓶,放置培养箱中,在28 ℃条件下发酵30 d,得到大米发酵物。
2.4 次级代谢产物提取与分离
向发酵好的大米发酵物中加入400 mL乙酸乙酯萃取24 h,并超声1 h,重复提取3次。减压浓缩,回收有机试剂,最终得到总浸膏57.7 g。
总浸膏经200~300目硅胶柱色谱分离,以石油醚-乙酸乙酯(20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,V/V)以及二氯甲烷-甲醇(20:1、10:1,V/V)梯度洗脱,获得7个组分Fr. 1~7。将组分Fr. 2(4.0 g)经Waters紫外引导自动纯化系统梯度洗脱,合并相似洗脱液后得到5个组分Fr. 2-1~2-5,将Fr. 2-4通过半制备液相获得化合物6(11.1 mg,tR=14.3 min,44%甲醇+0.1%甲酸,1.0 mL/min)和化合物7(5.0 mg,tR=26.8 min,44%甲醇+0.1%甲酸,1.0 mL/min)。将组分Fr. 4(6.14 g)进行硅胶柱色谱分离(200~300目),用石油醚-乙酸乙酯(20:1~1:1)梯度洗脱,合并相似洗脱液后得到5个组分Fr. 4-1~4-5,将组分Fr. 4-3(2.27 g)通过半制备液相色谱获得化合物2(5.2 mg,tR=38.4 min,53%甲醇,1.0 mL/min),Fr. 4-4通过半制备液相色谱获得化合物3(3.2 mg,tR=31.8 min,53%甲醇,1.0 mL/min)。将组分Fr. 3(5 g)进行硅胶柱色谱分离(200~300目),用石油醚-乙酸乙酯(20:1~1:1)梯度洗脱,合并相似组分得到5个组分Fr. 3-1~Fr. 3-5,将组分Fr. 3-5(0.52 g)经半制备液相色谱分离纯化得到化合物4 (2.0 mg,tR=27.7 min,67%甲醇,1.0 mL/min),将组分Fr.3-4(0.56 g)经半制备液相色谱分离得到化合物1(2.3 mg,tR=40.0 min,52%甲醇,1.0 mL/min)。将组分Fr. 5(8.2 g)经Waters紫外引导自动纯化系统梯度洗脱,得到5个组分Fr. 5-1~5-5,将组分Fr. 5-4(2.2 g)经半制备液相色谱分离得到化合物5(1.2 mg,tR=28.6 min,64%甲醇,1.0 mL/min)。
2.5 结构解析
1D、2D NMR实验均由Bruker Avance Ⅲ 600高分辨核磁共振波谱仪测定。将样品溶解于DMSO中,化学位移δ用ppm表示,耦合常数J用Hz表示。1H和13C NMR的工作频率分别为600 MHz和150 MHz,1H-1H COSY、HMBC、HSQC和NOESY采用标准脉冲程序。并采用离子淌度-四级杆飞行时间串联质谱仪测定化合物的分子量。
2.6 抗菌活性测定
根据文献报道方法[18],分别将大肠埃希菌和金黄色葡萄球菌供试液配制成1×106CFU/mL;将待测药物和阳性药氯霉素分别用DMSO配成1 mg/mL溶液。
设有待测药物和阳性对照药氯霉素组,取40 μL药物和160 μL无菌培养基加入96孔板的第2列中,从第2列孔中吸取100 μL到第3列孔中并加入100 μL无菌培养基混合均匀,再从第3列吸取100 μL到第4列中并加入100 μL无菌培养基混合均匀,以次类推对半稀释直至第7列,最后向每列孔中都加入100 μL的供测菌液使其混合均匀,使得待测药物和阳性对照药氯霉素的浓度依次为200、100、50、25、12.5、6.25 μg/mL。并将第8列设置为菌液对照,将第9列设置为无菌培养基对照,最后将孔板置于37 ℃条件下培养24 h。并用酶标仪测定A600处的A值,当待测药物组的A值小于菌液对照组的A值一半时为待测药物的MIC值,如果待测药物的MIC值大于100 μg/mL视为没有抗菌活性,每个实验平行3次。
3 结果
3.1 菌株鉴定
通过对菌株NSRT-4 ITS区域的PCR扩增和测序,获得ITS序列为557 bp,提交GenBank数据库获得登录号PQ469949。将得到的ITS序列与NCBI数据库进行BLAST比对分析,结果显示该序列与土曲霉属菌株的ITS序列一致性最高,其中与Aspergillus terreus AY839 (MG250398.1)的ITS序列同源性高达99.82%,且在进化树上处于同一分支(图2)。因此,初步鉴定此菌株为土曲霉,命名为Aspergillus terreus NSRT-4,并保存于广西中医药大学。
3.2 结构鉴定
化合物1为浅黄色固体,化学式为C32H40O5N2,HR-ESI-MS显示分子离子峰m/z 533.3083 [M+H]+(计算值533.3015, C32H40O5N2),不饱和度为14。红外光谱(KBr)显示化合物在3416、2929、1701、1604、1483、1384、1117和1027 cm-1处的吸收峰提示可能含有羟基、甲基、羰基和苯环等结构。1H NMR谱(表1)显示了6个烯氢δH 7.63 (1H, d, J=7.8 Hz, H-29),7.34 (1H, d, J=7.8 Hz, H-26), 7.34 (1H, m, H-27), 7.15(1H, m, H-28), 6.62 (1H, d, J=12.0 Hz, H-1)和5.81 (1H, d,J=12.0 Hz, H-2);5个次甲基氢δH 5.17 (1H, d, J=10.2 Hz,H-22), 3.51 (1H, dd, J=10.2, 4.8 Hz, H-7), 2.21 (1H, t,J=1.8 Hz, H-5), 2.12 (1H, dd, J=13.8, 5.4 Hz, H-14)和1.39 (1H, m, H-9);6个亚甲基氢δH 2.59 (1H, m, H-15),2.23 (1H, m, H-15), 1.85 (1H, m, H-12), 1.76 (1H, m,H-11), 1.70 (1H, m, H-6), 1.59 (1H, m, H-6), 1.59 (1H,m, H-11), 1.41 (1H, m, H-12), 1.05 (1H, m, H-32),1.04 (1H, m, H-31), 1.02 (1H, m, H-31)和0.94 (1H, m,H-32);5个甲基氢δH 1.38 (3H, s, H-21), 1.35 (3H, s,H-20), 1.16 (3H, s, H-17), 1.10 (3H, s, H-18)和0.85 (3H,s, H-19)。13C NMR核磁共振谱(表1)显示2个羰基碳δC 173.5 (C-24)和166.9 (C-3);8个烯碳δC 157.2 (C-1),138.8 (C-30), 137.5 (C-25), 129.6 (C-27), 125.2 (C-29),124.8 (C-28), 120.0 (C-2)和113.9 (C-26);5个次甲基碳δC 81.6 (C-22), 76.7 (C-7), 59.3 (C-14), 55.1 (C-9)和53.6 (C-5);6个亚甲基碳δC 40.2 (C-12), 36.8 (C-15),31.5 (C-6), 21.1 (C-11), 14.4 (C-31)和10.6 (C-32);5个甲基碳δC 32.1 (C-21), 26.4 (C-20), 23.3 (C-17), 14.9(C-18)和11.5 (C-19)。通过计算不饱和度,除去双键与羰基占用的6个不饱和度后,推测该化合物存在8个环结构。基于以上1D NMR数据与teraspiridole B[19]的高度相似,不同之处在于teraspiridole B的C-7位连着一个乙酰基,推测化合物1(图3)与teraspiridole B同属于二萜吲哚生物碱类结构。
这一结论得到了二维核磁共振图谱数据的验证(图4)。根据COSY谱中观察到的相关性(H-1和H-2、H-5和H2-6、H2-6和H-7、H-9和H2-11、H2-11和H2-12、H-14和H2-15、H-26和H-27、H-27和H-28、H-28和H-29、H2-31和H2-32)以及HMBC谱中的相关性(H-1与C-3/5/9/10,H-5/20/21与C-4,H3-18与C-1/5/9/10,H3-19与C-7/8/9/14,H3-17与C-12/13/14,H2-15/H-22/H-29与C-16,H2-31/32与C-23),进一步证实了化合物1的平面结构如图4所示。
化合物1的相对构型通过NOESY谱确认的。在NOESY谱中,17-CH3与18-CH3和19-CH3呈十字相关,表明17-CH3、18-CH3和19-CH3位于同一平面,并指定为β构向。同样,H-21和H-5、H-5和H-7、H-7和H-9、H-9和H-14(图4)之间的相关性表明,这些质子位于分子的相反面,并指定为α构向。为了进一步确定化合物1的绝对构型,将计算的ECD与实验测得的CD数据进行比较。结果显示,计算的(5R, 7S, 8R,9R, 10R, 13S, 14S, 16S, 22S)-1ECD曲线与实验曲线(图5)具有更好的一致性。因此,化合物1的绝对构型被确定为5R,7S,8R,9R,10R,13S,14S,16S,22S,进一步证实了其与teraspiridole B的绝对构型一致,故将化合物1命名为teraspiridole E。
化合物2为浅黄色固体(甲醇),ESI-MS m/z:297.07 [M+H]+,化学式为C17H12O5。1H NMR (600MHz, DMSO-d6) δH : 8.08 (2H, d, J=8.4 Hz, H-7a,H-7b), 7.51 (2H, d, J=8.4 Hz, H-13a, H-13b), 6.75 (2H,d, J=8.4 Hz , H-12a, H-12b), 6.60 (2H, d, J=8.4 Hz,H-8a, H-8b), 5.83 (1H, s, H-10);13C NMR (150 MHz,DMSO-d6) δC:177.6 (C-2), 172.4 (C-4), 156.2 (C-14),152.4 (C-9), 147.4 (C-5), 130.5 (C-12a, C-12b), 127.6(C-7a, C-7b), 126.2 (C-11), 124.5 (C-6), 115.4 (C-8a,C-8b), 114.2 (C-13a, C-13b), 98.0 (C-10), 86.7 (C-3)。以上谱学数据与文献报道基本一致[20],故鉴定化合物2为aspulvinone E。
化合物3为浅黄色固体(甲醇),ESI-MS m/z: 240.12[M+H]+,化学式为C12H17O4N。1H NMR (600 MHz,DMSO-d6) δH : 6.01 (1H, s, H-5), 5.98 (1H, d, J=3.0Hz, H-7), 3.71 (1H, d, J=10.2 Hz, H-8), 2.13 (3H, s,H-13), 1.78 (1H, m, H-10), 1.40 (1H, m, H-9), 1.19(1H, m, H-9), 0.91 (3H, d, J=6.6 Hz, H-11), 0.86 (1H,d, J=6.6 Hz, H-12);13C NMR (150 MHz, DMSO-d6)δC : 154.6 (C-4), 153.3 (C-2), 141.8 (C-6), 130.9 (C-3), 113.8 (C-7), 92.3 (C-5), 68.5 (C-8), 39.4 (C-9), 24.2(C-10), 23.9 (C-11), 21.8 (C-12), 18.9 (C-13)。以上谱学数据与文献报道基本一致[21],故鉴定化合物3为dihydroisoflavipucine。
化合物4为黄色固体(甲醇),ESI-MS m/z: 415.16[M+H]+,化学式为C25H22N2O4。1H NMR (600 MHz,DMSO-d6) δH : 7.48 (1H, d, J=2.4 Hz, H-2'), 7.45 (1H,m, H-7''), 7.43 (1H, m, H-7'), 7.42 (1H, m, H-4'), 7.41(1H, m, H-2', H-4''), 7.13 (1H, m, H-6''), 7.10 (1H, m,H-6'), 7.01 (1H, m, H-5'), 6.99 (1H, m, H-5''), 3.42 (3H,s, 5-OCH3), 3.39 (3H, s, 4-OCH3), 3.22 (3H, s, 2-OCH3);13C NMR (150 MHz, DMSO-d6) δC : 147.9 (C-5), 144.5(C-1), 143.7 (C-4), 141.9 (C-2), 136.0 (C-8''), 135.9 (C-8'), 127.2 (C-9''), 126.9 (C-9'), 125.5 (C-2''), 125.2 (C-2'), 121.1 (C-3), 120.8 (C-4''), 120.6 (C-4'), 120.6 (C-6''), 120.4 (C-6'), 118.6 (C-5'), 118.4 (C-5''), 115.8 (C-6), 111.4 (C-7'), 111.3 (C-7''), 107.4 (C-3'), 107.1 (C-3''),60.5 (5-OCH3), 60.3 (4-OCH3), 59.9 (2-OCH3)。以上谱学数据与文献报道基本一致[22],故鉴定化合物4为asterriquinol E。
化合物5为黄色固体(甲醇),ESI-MS m/z: 431.16[M+H]+,化学式为C25H22N2O5。1H NMR (600 MHz,DMSO-d6) δH : 7.61 (1H, d, J=7.2 Hz, H-4''), 7.39 (1H,d, J=8.4 Hz, H-7'), 7.30 (1H, d, J=2.4 Hz, H-4'), 7.27(1H, d, J=8.4 Hz, H-2'), 7.19 (1H, m, H-6''), 7.06 (1H,m, H-5'), 6.94 (1H, t, J=7.2 Hz, H-6'), 6.71 (1H, td,J=7.2, 1.2 Hz, H-5''), 6.60 (1H, d, J=7.8 Hz, H-7''), 6.08(1H, d, J=3.6 Hz, H-2''), 3.97 (3H, s, 4-OCH3), 3.46(3H, s, 5-OCH3), 3.26 (3H, s, 2-OCH3);13C NMR (150MHz, DMSO-d6) δC: 149.5 (C-8''), 147.8 (C-1), 145.7(C-4), 145.2 (C-5), 137.8 (C-2), 135.9 (C-8'), 130.3 (C-9''), 129.1 (C-6''), 127.1 (C-9'), 125.4 (C-4''), 125.1 (C-2'), 123.7 (C-6), 122.9 (C-3), 120.8 (C-6'), 120.0 (C-4'),118.7 (C-5'), 118.1 (C-5''), 111.4 (C-7'), 108.7 (C-7''),106.9 (C-3'), 105.6 (C-2''), 88.7 (C-3''), 61.3 (5-OCH3),60.3 (2-OCH3), 59.6 (4-OCH3)。以上谱学数据与文献报道基本一致[22],故鉴定化合物5为asterriquinol F。
化合物6为黄色油状(甲醇),ESI-MS m/z: 157.08[M+H]+,化学式为C8H12O3。1H NMR (600 MHz,DMSO-d6) δH : 5.90 (1H, s, H-2), 4.30 (1H, d, J=2.4 Hz,H-4), 3.85 (1H, d, J=2.4 Hz, H-5), 2.36 (2H, m, H-6), 1.59(1H, m, H-7), 1.50 (1H, m, H-7), 0.92 (3H, t, J=7.2 Hz, H-8);13C NMR (150 MHz, DMSO-d6) δC : 203.4 (C-1), 178.3(C-3), 126.1 (C-2), 80.8 (C-5), 77.1 (C-4), 31.1 (C-6),19.5 (C-7), 13.8 (C-8)。以上谱学数据与文献报道基本一致[23],故鉴定化合物6为dihydroterrein。
化合物7为黄色油状(甲醇),ESI-MS m/z: 155.07[M+H]+,化学式为C8H10O3。1H NMR (600 MHz,DMSO-d6) δH: 6.73 (1H, dq, J=15.6, 6.6 Hz, H-7), 6.38(1H, dd, J=15.6, 1.8 Hz, H-6), 6.02 (1H, s, H-2), 4.50(1H, d, J=3.0 Hz, H-4), 3.89 (1H, d, J=2.4 Hz, H-5),1.89 (3H, dd, J=6.6, 1.8 Hz, H-8);13C NMR (150 MHz,DMSO-d6) δC: 203.7 (C-1), 168.5 (C-3), 139.4 (C-7),125.5 (C-6), 124.8 (C-2), 80.8 (C-5), 76.4 (C-4), 19.2(C-8)。以上谱学数据与文献报道基本一致[23],故鉴定化合物7为terrein。
3.3 抗菌活性结果
化合物1和6~7对大肠埃希菌表现出一定的抗菌活性,化合物7对金黄色葡萄球菌也显示出抗菌活性,其MIC值均为50 μg/mL(表2)。
4 结论与讨论
本研究通过对烟草根部内生真菌土曲霉NSRT-4次级代谢产物进行分离纯化,获得了7个化合物,包括1个新的二萜吲哚生物碱和6个已知化合物。抗菌活性测试结果表明,化合物1、6和7对供试菌株表现出不同程度的抑制活性。
根据文献报道,化合物2具有显著的α-葡萄糖苷酶抑制活性和抗甲型H1N1流感病毒活性[14,20]。化合物4可通过抑制脂多糖(LPS)诱导的小胶质细胞一氧化氮的生成,而表现出抗炎活性[22]。化合物5对人肺癌细胞A549,人结肠癌细胞HCT116,人肝癌细胞HepG2细胞均表现出显著的细胞毒性[24]。化合物7通过诱导细胞凋亡和细胞周期停滞在人类癌细胞中显示出抗癌活性[25-26]。本研究对上述7个化合物进行抗菌活性测定,结果表明,化合物1和6~7对大肠埃希菌表现出一定的抗菌活性,其MIC值均为50 μg/mL。基于上述结果,可进一步探索该菌株的次级代谢产物,以发现更多具有显著抗菌活性的化合物,为临床上抗菌药物的研发提供参考。本研究丰富了土曲霉次级代谢产物的多样性,为其开发利用奠定了基础。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突
参考文献(略)
引用格式:吴燕梅, 许旭东, 马国需, 等. 内生真菌土曲霉Aspergillus terreus NSRT-4次级代谢产物及其抗菌活性研究[J]. 中国抗生素杂志, 2026,51(7): 886-893.
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